Главная»Дом»Дача»Садоводство»Овощные культуры»Селекция на болезнеустойчивость огурцов

Селекция на болезнеустойчивость огурцов

Селекция на болезнеустойчивость огурцов

Селекция растений на устойчивость к болезням и вредителям базируется на учении об иммунитете растений.


Наиболее вредоносными болезнями огурца являются угловатая пятнистость листьев, мучнистая роса, антракноз, оливковая пятнистость, ложная мучнистая роса, огуречная мозаика.
Большой вред, особенно в защищенном грунте, приносят корневые гнили — возбудители почвенные грибы рода Fusarium. Кроме того, могут встречаться аскохитоз, белая гниль, зеленая и белая мозаика.


В настоящее время распространилась в весенних теплицах и в открытом грунте бурая пятнистость листьев.


Селекция на устойчивость к вредителям у культуры огурца пока проводится недостаточно. В последние годы значительно усилились работы по созданию форм огурца, устойчивых к паутинному клещику, а также устойчивых сортов к галловой нематоде. Действенным методом борьбы с этими болезнями является создание сортов с комплексной устойчивостью.
Селекция устойчивых к болезням сортов и гибридов ведется теми же методами, как и восприимчивых, но для выведения иммунных и устойчивых сортов необходим исходный материал — доноры устойчивости. В условиях, благоприятных для развития паразита и растения, длительный отбор при отсутствии борьбы с болезнями способствует накоплению генов устойчивости в растении.


В неблагоприятных условиях для паразита сорта мало страдают от болезней, а попадая в условия, оптимальные для инфекции, сильно поражаются.
Выведение устойчивых сортов, как правило, осуществляется при искусственном заражении растений соответствующими патогенами. Инфекционный фон, на котором проводится оценка селекционного материала, организуется в теплицах, на отдельных изолированных участках в поле и в лабораторных условиях.


В качестве инфекции целесообразно использовать местные популяции возбудителя.


Внешние условия сильно влияют на устойчивость к болезням, и поэтому к оценке в неконтролируемых условиях надо относиться очень осторожно, а оценку на устойчивость целесообразно делать в контролируемых условиях среды. Наиболее эффективно проводить инокуляцию и оценки в камерных теплицах, позволяющих создавать соответствующие благоприятные условия для каждого патогена в отдельности. Но можно для практической селекции пользоваться и необогреваемыми малогабаритными пленочными теплицами площадью 50—200 м2, пространственно изолированными друг от друга.


Для иммунологической характеристики образца широкий унифицированный классификатор СЭВ предлагает использовать шкалы двух типов степени поражения и степени устойчивости.
Первую шкалу применяют при ежегодной оценке в полевых условиях, вторую — в экстремальных условиях полевого опыта и при изучении на инфекционном фоне, а также при многолетнем обобщении.


При описании сорта (для сдачи в госкомиссию) учитывают поражаемость сорта болезнями (дается процент растений, процент плодов, пораженных основными болезнями).
Для оценки пораженности растений преимущественно используют пятибалльную шкалу со следующими значениями баллов: 0 — иммунные; от 0,1 до 0,5 — высокоустойчивые; 1 — очень слабая восприимчивость; 2 — слабая; 3 — средняя; 4 — сильная восприимчивость.


При оценке образцов указывают высший балл поражения и процент пораженных растений. Учет степени поражения целесообразно проводить, если контрольный образец поражен не менее 10%.


Поскольку   устойчивость — признак   наследственный, инокуляцию растений проводят по проросткам, по молодым и взрослым растениям, по отдельным листьям, по кусочкам стеблей, по плодам и т. д. в зависимости от типа болезни.


Оценку на устойчивость к болезням проводят по отделенным от растений листьям, кусочкам листьев, стеблей. Для сохранения жизнеспособности отделенных органов применяют бензимидазол в концентрациях 0,006-процентного раствора и помещают их на светоустановки с интенсивностью освещения до 16 000 люкс. Это обеспечивает в среднем сохранение жизнеспособности отделенных органов до 35—40 дней.


Листья лучше брать утром, со второго-третьего ярусов от точки роста и раскладывать в чашки Петри, фотокюветы — на увлажненную водой фильтровальную бумагу, а затем обертывать черешки листьев и других частей растения смоченной в бензимидазоле ватой. Заражение проводят обычно, равномерно опрыскивая суспензией спор нужных патогенов. Инокулируемую сторону листьев, часть стеблей нельзя смачивать бензимидазолом.


Селекция на устойчивость к каждой болезни имеет и свои специфические особенности. Для более строгой оценки селекционного материала и отбора устойчивых форм всегда должны быть контроля — восприимчивые сорта. Их следует инокулировать вместе с опытными номерами и сажать через 5—10 номеров образцов и на защитках.


Для успешной селекции на устойчивость необходимо для каждой болезни изучать расовый состав возбудителей и своевременно выявлять потенциально опасные расы и составлять необходимый инфекционный материал.


При выведении новых сортов, в том числе болезнеустойчивых, надо стремиться подбирать родительские формы, происходящие из разных географических зон, различающиеся генетической природой с тем, чтобы увеличить генетическую изменчивость за счет создания многолинейных и гибридных сортов. Будущий болезнеустойчивый сорт, линия, гибрид должны отличаться высокой урожайностью, скороспелостью и другими полезными хозяйственными и биологическими признаками. Поэтому в скрещивание включаются формы с наиболее желательными хозяйственно-полезными признаками, хотя и не обладающие устойчивостью к болезням.


Зеленая и белая мозаика. Зеленая и белая мозаика широко распространены во всех странах мира в основном в защищенном грунте: инфекция передается через сок больных растений, семена, растительные остатки в почве и дренажные воды. В гидропонных теплицах часто наблюдается 100-процентное поражение растений ОВ-2. Этот вирус узкоспециализированный— поражает   только растения семейства Сucurbitaceae (огурцы, арбузы, лагенарии, тыквы, дыни И др.).


Растение, пораженное вирусом зеленой мозаики, в зависимости от сорта снижает урожай плодов на 15% и более, а от белой мозаики потери могут достигать 50% И более. Кроме того, есть основание предполагать, что плоды огурца с больных вирусом растений вредны для здоровья человека.


При поражении ВОМ-2 появляются пестрая расцветка с чередованием темно-зеленых и светло-зеленых участков, а также деформация листовой пластинки, пузыревидные вздутия. Эти признаки особенно отчетливы на верхушках побегов и главного стебля; по мере старения листьев симптомы поражения становятся менее четкими. При температуре выше 25° С на огурце появляются яркие белые и желтые участки звездчатой формы — это белая мозаика, то есть штамм Cucumis virus 2A. У сильно пораженных вирусом растений укорачиваются междоузлия, уменьшается листовая пластинка.


Оценку на устойчивость к ВОМ-2 и его штамму ОМ-2А проводят при естественном и искусственном заражении. Инокуляцию проводят соком растений с симптомами поражения зеленой мозаикой. Отжатый сок больных растений разбавляют водопроводной водой 1 :5. Для ОМ-2 сок, полученный из пораженных растений, предельно может быть разбавлен до 10~6, 10~7 и при этом сохраняется его инфекционность.


Как первичный источник инфекции в начале вегетационного периода лучше всего использовать очищенный препарат вируса. Выделение вируса из листьев огурца проводится по методу Коммонера. Растения в фазе семядолей или появления первого настоящего листа инокулируют путем потирания семядолей кисточкой, ватным тампоном или кусочком поролона, смоченным в инфекционном растворе, или опрыскивают с помощью вирусопульта (1 —1,5 атм), находящегося на расстоянии 20—30 см от поверхности растений. Вирус ОВ-2 сохраняется в соке листьев в морозильной камере 5—6 месяцев и 11 месяцев в гербарном материале. После заражения поддерживают температуру на уровне 20—25° С. Учет и оценку проводят через 15—20 дней. На относительно устойчивых растениях признаки поражения появляются позднее на 15— 30 дней по сравнению с неустойчивыми, кроме того, они дают выше урожай и в период резкого колебания ночных и дневных температур не увядают.


В конце вегетации выделенные устойчивые,растения проверяют па наличие скрытой инфекции вируса. Для диагностики вирусов существуют различные методы. При селекции огурца применяют в основном метод растений-индикаторов (биологический тест) и серологический тест.


В качестве индикаторов используют сильно поражаемые сорта огурцов, например Марфинский, но заведомо свободные от инфекции.


Серологический тест менее чувствительный, чем биологический, но позволяет быстро и просто идентифицировать вирус при наличии сыворотки, специфической к данному вирусу. При этом очень важно соблюдение объема сыворотки, к каждой капле сока, отжатого от растения, добавляются две капли диагностической или контрольной сыворотки. Если от диагностической сыворотки выпадет осадок, значит, есть вирус в растении.


При необходимости используют электронный микроскоп, который позволяет точно определить наличие инфекции вируса, а также определить форму, размер вирусных частиц. Вирионы ВОМ-2 имеют палочковидную форму, длина их 270—300 ммк, ширина— 15—17 ммк.


Исходный материал для селекции на устойчивость очень ограничен, поэтому целесообразно обратиться к отдаленной гибридизации и к мутагенезу.
В последующие годы было замечено, что устойчивые к ВОМ-2 растения, как правило, бывают устойчивы и к мучнистой росе. Вероятно, гены устойчивости к зеленой огуречной мозаике сцеплены с генами устойчивости к мучнистой росе. Поэтому, подбирая исходный материал для создания устойчивых к ВОМ-2 сортов, надо в первую очередь брать сорта, устойчивые к мучнистой росе.


Надежных мер борьбы с мозаикой пока нет. Необходимо активно бороться с переносчиком инфекции — тлей. Самый эффективный способ борьбы — выведение устойчивых сортов.
Инокуляцию проводят в теплицах при температуре 18—25° С, в камерах искусственного  климата при 20— 22°С. Техника инокуляции аналогична вирусу ОВ-2.


Для инокуляции берут сильно зараженные листья, отжимают из них сок. Потом одну часть сока смешивают с двумя объемами 0,03 м фосфатного буфера рН 7,0.


Фосфатный буфер готовят путем смешивания растворов двухзамещенного фосфата натрия (Na2HPO4-12 Н2O) и однозамещенного фосфата калия (КН2Р04) соответствующей концентрации.
Для приготовления 0,03 м фосфатного буфера отдельно готовят 0,03 м раствора (1) Na2HPO4-12 H2O (10,74 г/л) и (2) КН2РO4 (4,08 г/л). При смешивании семи частей первого и второго растворов получают 0,03 м фосфатного буфера рН 7,0.


Выделение здоровых растений проводится через 13— 15 дней. Растения инокулируют в фазе семядолей в па-чале появления первого настоящего листа путем потирания семядолей кусочком поролона или стеклянным шпателем.


При селекции на устойчивость к огуречному вирусу ОВ-1 предусматривается защита от насекомых и получение чистой культуры огуречного вируса ОВ-1, очищая его через предварительное заражение им тыквы.


В качестве индикаторных растений для определения наличия скрытой инфекции вируса в растениях огурца целесообразно использовать марь киноа Chenopodium quinoa (Willd.), инфицирование которой соком больных растений огурца вызывает при температуре 20 —25° С появление местных некрозов, слегка желтоватых пятен. При инфицировании мари краснолистной Chenopodium amaranticolor (Coste et Beyn) па пятый-шестой день образуются видимые симптомы — точечные бледно-желтоватые некрозы с красно-коричневой каймой.


С помощью Chenopodium quinoa проводится определение концентрации вируса в растениях. Для этого после заражения соком растений инокулируют несколько половинок листа Ch. quinoa, а вторые половинки тест растения заражают контролем (сильно пораженный сорт). Степень поражения образца определяется количеством пятен (местных некрозов) на половниках листа индикаторного растения.


Кроме индикаторных растений проверку проводят также на скрытую инфекцию путем диагностической сыворотки к ОВ-1. Для диагностики вирусов растений по морфологии   вирусных  частиц  применяют электронный микроскоп.


Угловатая пятнистость листьев огурца
— широко распространенное во влажных районах заболевание огурца, наносящее большой экономический ущерб. На листьях образуются угловатые бурые пятна, которые засыхают, пораженная ткань листа выпадает, образуя угловатые отверстия.


Возбудитель болезни бактерии Pseudomonas lachry-mans (Sm. et Br.). Перед инокуляцией растения целесообразно в течение суток выдерживать в условиях повышенной влажности, через день после заражения влажность немного снижают. Заражение надо проводить в вечернее время. Инкубационный период составляет 8—10 дней. Инфекция передается с семенами и перезимовавшими растительными остатками.


Для борьбы с угловатой пятнистостью на семеноводческих посевах при обнаружении поражения на семядолях опрыскивают 0,5-процентной суспензией купрозана или 0,4-процентной суспензией хлорокиси меди. Норма расхода суспензии 150—200 л/га. Опрыскивание повторяют через 10—12 дней, в этом случае норму расхода жидкости увеличивают до 500—600 л/га.
Наиболее эффективно в селекции применять чистую культуру инокулюма, которую выращивают на твердой питательной среде (картофельный агар с рН 7,0). Инокулюм — бактериальную   суспензию получают, смывая дистиллированной водой 24—28 ч культуру бактерий. Концентрацию определяют но стандарту мутности ГКИ. Некоторые селекционеры измельчают свежесобранные больные листья (2 кг) и настаивают их 2—3 ч в 10 л воды, а после настой отфильтровывают через два слоя марли и заражают растения. Норма расхода настоя 300 л/га.
Заражение чистой культурой осуществляется путем замачивания семян в течение 2 ч в суспензии бактериальных клеток в концентрации 104 кл/мл из расчета 20— 46 мл суспензии на 100 лит. семян или опрыскиванием растений в концентрации 104— 105 кл/мл. Расход суспензии при заражении растений в фазе двух — четырех настоящих листьев 40—50 мл на 100 растений (опрыскивание из гидропульта с двух сторон). Учет степени заражения делают на четвертый — восьмой день в период максимального развития болезни, учитывая количество больных растений и степень поражения по следующей шкале в баллах: 0 — заболевание отсутствует; 0,1 — очень слабое поражение, на отдельных листьях встречаются только единичные пятна; 1 — заболевание проявляется примерно на 1/10 части всех листьев, покрывая 1/3 поверхности листа; 2 — сильная степень поражения, заболеванием охвачено до половины листьев растения, бактериальные пятна покрывают до 1/2 поверхности листа; 3 — сильная степень поражения, заболеванием охвачено свыше половины листьев растения, бактериальные пятна покрывают более 1/2 поверхности листа. К устойчивости относят растения с баллом поражения 0,0—0,1.


После высадки устойчивых растений на постоянное место в период массового цветения проводят повторную инокуляцию взрослых растений и снова отбирают устойчивые растения.
Инокуляцию растений проводят двумя способами — вначале экспресс-методом оценивают семьи. По 10 шт. семян от семьи намачивают в суспензии бактерий и после выращивают их в чашках Петри и оценивают в фазе проростков. Потом выделившиеся устойчивые семьи  (остаток семян) повторно высевают в теплицах и инокулируют в фазе двух — четырех настоящих листьев, опрыскивая их суспензией бактерий в концентрации 107 пли 10' бактериальных клеток в 1 мл воды. Чтобы создать условия высокой влажности (95—100%), после инокуляции растения па 6 ч закрывают пленкой.


При селекции на устойчивость к угловатой пятнистости ежегодно число устойчивых растений сильно колеблется и накопление генов устойчивости идет сравнительно медленно: через 8—12 поколений на некоторых растениях все еще встречаются единичные пятна, т. е. растения поражаются на 0,1 балла. В селекции эффективными оказались метод сложной ступенчатой гибридизации, оценка семей по проросткам экспресс-методом, повторная оценка молодых и взрослых растений в теплице и заключительная проверка устойчивых растений в поле при естественном заражении.


Мучнистая роса. Для борьбы с мучнистой росой в теплицах применяют системные фунгициды: фундазол, топсин и БМК путем опрыскивания растений и внесения препарата в почву. Концентрация для опрыскивания растений 0,1 — 0,2-процентная суспензия. В почву фунгициды вносят через пять дней после посадки из расчета 0,5 л 0,1-процентной суспензии на 1 растение.
Инокулюм собирают с сильно пораженных свежесобранных листьев путем стряхивания или смывания водой. Растения равномерно опрыскивают из гидропульта, ранцевого опрыскивателя и других приспособлений.


Оптимальный температурный режим при заражении грибом вида S. fuliginea будет 20—25° С, а при заражении грибом Е. cichoracearum—10—25° С.
Оценку проводят по следующей шкале: 0 — здоровые листья; 0,1—единичные признаки заболевания; 1—поражено до 1/4 поверхности листа; 2 — до 1/2; 3 — поражено более 1/2 поверхности листьев.

Ложная мучнистая роса (переноспороз). Инокуляцию растений лучше всего проводить в камерных теплицах, создавая оптимальные условия для развития гриба, путем опрыскивания суспензией, полученной от растирания в воде пораженных листьев. В суспензии при увеличении в 150 раз должно быть 10— 20 шт. зооспорангиев.


Антракноз (возбудитель —гриб Colletotrichum la-genanum (Pass) Ellist et Hals. Это заболевание наносит большой ущерб арбузам, дыням и огурцам.
Гриб поражает плоды, листья, стебли, черешки листьев растении. На пораженных органах образуются коричневые пятна, язвы, которые во влажную погоду покрываются розовым налетом. Плоды загнивают и становятся горькими.


Для борьбы с антракнозом применяют 0,2-процентные суспензии топсина-М, или фундазола, или 0,05-0Тит-центные байлетона.


В настоящее время выявлено семь рас патогена для огурцов в нашей стране наиболее вредоносна раса 1.


Для инокуляции можно использовать естественно зараженный материал (плоды больных огурцов). Гриб выращивают в термостате в течение 7—10 дней при температуре 26—27° С на овсяном агаре (150 г овсяных хлопьев и 20 г агара на 1 л воды) в чашках Петри. Споры смывают дистиллированной водой, фильтруют через двойной слой марли и доводят до 50—100 тыс. конидий в 1 мл. Этой суспензией опрыскивают растения, обычно в фазе двух-трех листьев, выращиваемые в горшочках в теплицах. Для сохранения высокой влажности зараженные растения укрывают на ночь полиэтиленовой пленкой. На пятый — десятый день проводят оценку на устойчивость по шкале: 0 — здоровые растения; 4 — на листьях и черешках единичные пятна; 2 — среднее поражение листьев и черешков, слабое — стебля; 3 — поражено до 1/2 листа, среднее поражение черешков и стебля; 4 — сильное поражение (пятна слились), растения близки к гибели или погибают.


Оценка устойчивости может проводиться в лаборатории по инокулированным плодам или по трем-пятидневным завязям и листьям во влажной камере.


Оливковая пятнистость. Возбудитель этой болезни—гриб  Cladosporium cucumerinum. Болезнь сильно поражает огурец в тех районах, где наблюдается  в  период  вегетации даже временно высокая влажность воздуха, относительно пониженная  температура и ее резкие колебания (Нечерноземная зона, север Украины, Урал, Сибирь и другие места). Оливковая пятнистость   поражает все органы огуречного растения на всех фазах онтогенеза, но наиболее она вредоносна на плодах, на которых образуются буровато-оливковые язвочки и плоды не идут в стандартную продукцию.


Источник инфекции сохраняется в открытом и в защищенном грунтах на почве, на растительных остатках, па семенах, а в теплицах еще и на проволоке, каркасах, стеллажах.


Наиболее эффективным методом борьбы с оливковой пятнистостью является выведение устойчивых сортов.


Селекцию по созданию устойчивых к оливковой пятнистости сортов проводят на провокационном фоне при искусственном заражении. Оценку на устойчивость чаще всего ведут в ранние фазы развития — в фазе семядолей, одного — трех настоящих листьев. Но можно проводить заражение и оценку на устойчивость и по срезанным верхушкам взрослых растений, по отдельным листьям, по ломтикам плода и даже по усам.


Поражение растений зависит от количества и качества инокулюма, его агрессивности, возраста культуры и энергии прорастания конидий.


Суспензию спор готовят на одно-двухнедельной культуре гриба, выращенного на агаризированпой среде Чапека, концентрация суспензии 10—15 спор гриба в поле зрения микроскопа при увеличении 20 X 10. После инокуляции надо создать высокую влажность — 80—100% и температуру: днем 20—26° С и ночью 15—20° С. В теплице растения перед инокуляцией обычно находятся в фазе появления первого листа. Растения обильно поливают и после заражения укрывают пленкой. Оценку растений в фазе двух-трех листьев на устойчивость к оливковой пятнистости проводят по пятибалльной шкале: 0 —иммунные, 1—поражен черешок листа или часть листа, 2— поражен стебель, 3 — поражен стебель и черешок, 4 — поражена верхушка растения. Для селекции целесообразно использовать растения с баллом 0. Если форма хозяйственно-ценная, можно брать в работу растения, пораженные па 1 балл, остальные выбраковать.
Оценку по проросткам удобнее проводить в лаборатории до посева в грунт коллекционных образцов, семей и инбредных линий, раскладывая семена по 10 шт. каждого образца в чашки Петри на влажную фильтровальную бумагу и инокулируя их суспензией спор гриба. Учет заболевших проростков ведут по появлению фиолетовых пятен на семядолях и на подсемядольном колене или точечных водянистых пятен на семядолях и подсемядольном колене. Все неустойчивые образцы нужно выбраковывать до посева в грунт; это сокращает затраты труда и экономит силы и средства.


Любые сорта, имеющие в своем составе хотя бы небольшое количество устойчивых растений можно сделать через пять-шесть отборов на инфекционном фоне высокоустойчивыми, и эта устойчивость, вероятно, будет сохраняться в поколениях до возникновения более агрессивных рас. Но пока устойчивые к оливковой пятнистости сорта существуют более 40 лет, и о потере устойчивости данных нет.


Бурая пятнистость листьев (макроспориоз). Возбудитель болезни гриба Ulocladium consor-tiale (Thum) Simmons. Бурая пятнистость огурца очень вредоносна для огурца.


Оптимальная температура для прорастания конидий— 21—25° С.


Для инокуляции растений используют чистую культуру и зараженные листья, лучший способ — опрыскивание суспензией конидий гриба. В чистой культуре гриб выращивают на среде Ваксмана или Чапека при температуре 25° С в течение 10—14 дней. Для инокуляции используют суспензию конидий гриба  при концентрации не менее 20 конидий при увеличении 8 X 15 в поле зрения микроскопа. Оценку на устойчивость проводят на 7—10-й день после заражения по 5-балльной шкале: 0 — здоровые растения, 1 —на листьях единичные пятна, 2 — пятна на 1/4, 3 — пятна на 1/4, 4— пятна занимают больше половины листьев.


Исходный материал ограничен. Известны следующие сорта, обладающие повышенной устойчивостью к бурой пятнистости: Мелкобугорчатый 29, Сюрприз 66, Майский, Ива.


Корневая гниль. Гибель растений от корневой гнили в теплицах может достигать 65—70%. Первые симптомы поражения растений проявляются в жаркие полуденные часы — растения увядают.


В качестве инокулюма используют чистые культуры грибов возбудителей болезни, взятых с пораженных растений и размноженных на стерилизованных субстратах (семена овса, пшеницы, кукурузы, риса и др.)


При заражении растений необходимо учитывать, что наиболее благоприятные условия для развития болезни— температура грунта 15—17° С и влажность воздуха 90—95% от полной влагоемкости. При температуре выше 38° С рост гриба прекращается.


При селекции на устойчивость к корневой гнили удобен экспресс-метод оценки при посеве семян в древесные опилки. Опилки перед посевом поливают питательным раствором (смесь Журбицкого) и потом вносят инокулюм, тщательно перемешивая его с опилками.


Учет больных растений проводят в период образования первого настоящего листа, отбирая растения со здоровыми корнями, а иногда и растения со слабым побурением центрального корня (на корне проявляются отдельные бурые пятна), остальные все выбраковывают.


Отобранные здоровые растения нужно после учета распикировать в горшки и создать им благоприятные условия для приживания. В фазе четырех-пяти листьев еще раз проводят выбраковку всех погибших и слабых растений, привядших в жаркие часы, а хорошо развитые растения, не погибающие в условиях, благоприятных для гриба, высаживают на постоянное место. Перед высадкой рассады в грунт инфекцию вносят в бороздки.


После созревания семенников все растения выкапывают и оценивают по состоянию корневой системы на устойчивость к корневой гнили, отбраковывая при этом все растения с признаками поражения  корневой гнилью.


Оценку проводят по шкале в баллах 0 — корни здоровые; 1 — слабое побурение центрального корня или отдельные углубленные коричневые пятна; 2 — побурение нижней части центрального корня, мацерация отдельных корешков; 3 — центральный корень, корневая шейка бурая, мацерация тканей охватывает до 1/2 корня; 4 — корень бурый, размочаливается, растение полусухое, близко к гибели пли погибло. В селекции используются здоровые растения, иногда с баллом 1.


Высокую устойчивость к корневым гнилям показали советские сорта: Ленинградский тепличный 23, Изобильный 131, Плодовитый 147, Траку улучшенный, Длинно-плодный 1294, Посредник 97, Урожайный 37, болгарский сорт Куленкампа; Torpedo (К-Ю12) (Дания), Concom-bresm (Франция), Sporu, Levo, Hokus (Нидерланды).


Аскохитоз.   Возбудитель — гриб   Ascochyta   cucumeris Faut et Roum (в иностранной литературе его часто называют Mycosphaerella citrullina Gorss).


Для борьбы с аскохитозом применяют опрыскивание 0,1-процентным раствором топсина.


Аскохитоз поражает все части растения. На стеблях пораженная ткань сухая, сероватой окраски, покрытая частыми черными точками (плодовые тела), на листьях крупные желтовато-бурые пятна, на плодах черные пятна.


Болезнь распространяется путем перезаражения растений пикноспорами и аскоспорами. Инкубационный период длится от 5 и более дней. Сортов и гибридов, высокоустойчивых к этой болезни, пока не создано, но имеется ряд относительно устойчивых форм и сортов, используя которые для селекции можно значительно повысить устойчивость огурцов к аскохитозу.
Таким исходным материалом для селекции может служить Изобильный 13, Дин-зо-сн, Длинноплоднын 1294, Ленинградский тепличный 23, Майский, ТСХА-98, ТСХА-1, Toska 70, Pollex, Fi Andrex X Осенний, Первенец, La Reine, Аньшанский, Mid, Tokyo АО, Комнатный Рытова, С-7-63, Marketmore.


В качестве инокулюма рекомендуется брать двухнедельную чистую культуру гриба или больные листья, стебли со спороношениями гриба. Их погружают на 10— 15 мин в небольшое количество дистиллированной воды, а затем полученную споровую суспензию разбавляют водой до концентрации 20—30 спор при увеличении поля зрения микроскопа 10 X 10. Растения опрыскивают из пульверизатора. Температура после заражения поддерживается в пределах 20—25° С.


Растения эффективно инокулируют дважды. Сначала в фазе одного-двух настоящих листьев, потом в период начала плодоношения. Можно заражать отдельные листья.
Сеянцы выращивают в древесных опилках, поливаемых питательным раствором (смесь Журбицкого). Площадь питания 4x3 см. Посев семян и заражение растений проводят в закрытой пленкой камере для создания повышенной влажности. Удобно использовать также УРП, парники и т. д. На 7—10-й день после инокуляции проводят оценку. Отбирают здоровые растения и высаживают в грунт теплицы, загущенно — на 10—15 см, все появившиеся больные растения удаляют. Вторую инокуляцию проводят по взрослым растениям в фазе начала цветения.


Листовую и стеблевую формы аскохитоза учитывают по баллам. Для листовой формы поражение учитывают по  баллам: 0 — здоровые растения; 0,1—на отдельных листьях единичные пятна без спороношения; 1 — на отдельных листьях единичные пятна со спороношением гриба; 2— крупные, расплывчатые пятна со спороношением или без него; 3 — пятна на большинстве листьев занимают более половины листовой пластинки; 4 — на листьях всех ярусов  бурые засохшие пятна. Для стеблевой формы поражения учитывается по следующим баллам: 0 — здоровые растения; 0,1 —поражены остатки черешков листа и плодоножек; 1 — отдельные пятна (до 1 см); 2 — отдельные бурые пятна не более 3 см; 3 — пятна размером от 3 до 5 см, часто слившиеся пятна, растрескивание ткани, образование перетяжек. Для селекционной работы целесообразно отбирать растения с баллом 0 и 0,1 по листовой и стеблевой форме.


Белая гниль (склеротиниоз).
Белая гниль поражает все надземные органы (листья, стебли и плоды) огуречного растения на всех фазах развития. Этот гриб является факультативным сапрофитом. Источником первичной инфекции является почва.


Черпая пятнистость листьев (округлая пятнистость).
Возбудитель — гриб Corynespora cassiicola (Berk and Lurt), сто же называют также Corynespora meionis (Lind).
В последние годы эта болезнь появилась в теплицах отдельных хозяйств. Оценку на устойчивость к черной пятнистости проводят в камерах при температуре 20° С при 16-часовом дне. В фазе семядолей растения инокулируют нанесением капель на семядоли чистой культуры гриба в девятидневном возрасте. После инокуляции поддерживают влажность воздуха 100% в течение 48 ч. На внешней стороне семядолей внизу инокулированной капли появляются водяные вздутия, которые через 2—3 ч оседают. На устойчивых растениях водяных вздутий и коричневых пятен не образуется, листья остаются неповрежденными.

  • Оцените материал
    (0 голосов)
  • Прочитано 7636 раз